Новости науки

Этиология микозов экзотических рептилий

• 

Подробности

Создано 17.11.2017 17:49

Автор (ы):  Р.С. Овчинников, М.Г. Маноян, А.Г. Гайнуллина 
Организация(и):  Федеральное государственное бюджетное учреждение «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГБУ «ВГНКИ»). Москва, Россия.
Журнал: VetPharma  №4 - 2012



Экзотические рептилии (ящерицы, змеи, черепахи) в последние годы становятся все более популярными в качестве домашних питомцев, зачастую занимая нишу животных-компаньонов. Многие владельцы, не имея достаточного опыта, не могут обеспечить адекватные условия содержания и кормления для своих экзотических питомцев. Часто это приводит к снижению естественной резистентности организма животных, и, как следствие, к развитию инфекционных и паразитарных заболеваний. 

Холоднокровные животные, в отличие от млекопитающих и птиц, в силу своих физиологических особенностей имеют естественную предрасположенность к микотическим заболеваниям (A. Casadevall, 2005). При этом в качестве возбудителей выступают в основном убиквитарные виды грибов, не обладающие специализированными факторами вирулентности (такими, как термотолерантность). Микозы у пресмыкающихся, начинающиеся, как правило, с инфицирования кожного покрова, впоследствии могут распространяться на внутренние ткани и органы, трансформируясь в фатальные системные поражения (J. Pare et al., 1997, A. Thomas et al., 2002 и др.) Диагностика данных заболеваний осложняется отсутствием характерных клинических предикторов, необходимостью детального микологического исследования, широким видовым разнообразием грибов-возбудителей. Важным этапом лабораторного исследования является определение чувствительности выделенной культуры возбудителя к набору антимикотиков, что позволяет выбрать оптимальное средство терапии.

Нами был проведен микологический анализ патматериала, отобранного от 28 рептилий следующих видов: зеленая игуана (Iguana iguana) – 10 особей; черепаха красноухая (Trachemys scripta elegans) – 3, хамелеон ковровый (Chameleon lateralis) – 1; хамелеон европейский (Chameleon chamaleo) – 1; хамелеон леопардовый (Chameleon pardalis) – 1; черепаха среднеазиатская (Agronemis horsfeeldii) - 2; черепаха трионикс (Trionyx chinesis) – 1; черепаха каспийская (Clemmys caspiсa) – 1; ящерица плащеносная (Chlamidosaurus kingi) – 1; змея молочная (Lampropeltis triangulum annulata) – 1; варан среднеазиатский (Varanus griseus) – 1; геккон толстохвостый (Hemitheconyx caudiscinctus) – 1; сцинк синеязыкий (Tiliqua scincoides) – 1; бородатая агама (Pogona vitticeps) – 1; шипохвост - (Uromastyx) – 1; змея листоносая (Phyllorhynchus brownii) – 1.

Микологический анализ включал микроскопию препаратов патматериала в КОН, посев образцов на селективные питательные среды, идентификацию выделенных культур в соответствии с атласом De Hoog et al. (2000) и определение чувствительности изолятов к набору антифунгальных препаратов (амфотерицин В, нистатин, клотримазол, флуконазол, кетоконазол, итраконазол) диско-диффузионным методом. Этиологическую роль гриба подтверждали при обнаружении в патматериале вегетирующих грибных гиф и выделении нескольких однотипных культур, морфологически соответствующих грибным элементам в патматериале.

В результате исследования микозы были диагностированы в 24 из 28 случаев (85,7%). Разнообразие наблюдавшихся клинических форм представлено на рис. 1.

 

В большинстве случаев микозы у рептилий проявлялись как сквамозные сухие дерматиты, очаги депигментации кожи, некротические поражения. Вместе с тем в 3-х случаях были диагностированы системные микозы, в 2-х из них – посмертно (возбудитель Penicillium chrysogenum). В одном случае системный микоз внешне был выражен как некротическое кожное поражение (возбудитель Fusarium moniliforme), однако вскоре животное пало, и из внутренних органов были выделены культуры того же вида гриба. Этот случай подчеркивает необходимость своевременного диагностического исследования при подозрении на микотическое заболевание.

В качестве возбудителей микозов идентифицированы грибы 17 различных видов. Частота выделения различных видов грибов представлена на рисунке 2.

В большинстве случаев от рептилий были выделены «оппортунистические» возбудители - убиквитарные потенциально-патогенные мицелиальные и дрожжевые грибы. Среди них доминировад вид Fusarium moniliforme (16,1%). Известно, что виды рода Fusarium – распространенные возбудители поверхностных и глубоких микозов у холоднокровных животных (P. Frelier et al., 1985F. Cabanes et al., 1997, F. Rose et al., 2001). Вторым по частоте встречаемости был вид Penicillium chrysogenum (12,9%). По литературным данным, грибы рода Penicilliumтакже часто вызывают микозы рептилий (G. Migaki et al., 1984).

В 9,6% случаев заболевания рептилий были вызваны кератинофильным видом Chrysosporium-анаморфой Nannizziopsis vriesii (CANV - принятая в литературе аббревиатура). В данном исследовании CANV был выделен из очагов сквамозного дерматита у двух зеленых игуан и бородатой агамы (см. рис. 3-6). Впервые данный вид гриба был выделен в практике нашей лаборатории в 2007 г. (Р.С. Овчинников с соавт., 2007), более ранние случаи обнаружения CANV на территории РФ нам неизвестны. В отличие от большинства других возбудителей микозов рептилий, CANV является истинным патогеном, т.е., способен, подобно грибам-дерматофитам, самостоятельно вызывать инфекцию у здоровых иммунокомпетентных животных. На кожном покрове здоровых особей он практически не встречается. Также было показано, что данный вид высококонтагиозен, может передаваться как при непосредственном контакте, так и через инфицированные объекты внешней среды, а также через воздух (J. Pare et al., 2006). За рубежом CANV довольно часто диагностируют в качестве возбудителя микозов рептилий (J. Pare et al., 1997, M. Abarca et al., 2008). Что особенно важно, часто вызываемые CANV поверхностные инфекции распространяются на глубокие ткани, приводя к летальным исходам (M. Bowman et al. (2007), A. Thomas et al. (2002), D. Nichols et al. (1999), M. Bertelsen et al. (2005).

Кроме того, некоторые виды рода Chrysosporium в ряде стран являются распространенными возбудителями дерматомикозов людей (J. Kane et al., 1997). Хотя случаи заражения человека от рептилий в доступной литературе не описаны, такую вероятность исключать нельзя, учитывая высокий патогенный потенциал грибов рода Chrysosporium и их филогенетическое и физиологическое сродство с грибами-дерматофитами.

Среди других видов грибов в нашем исследовании были диагностированы грибы-оппортунисты Chaetomium globosum (9,6%), Trichosporon ovoides(9,6%), Acremonium spp. (6,4%), а также виды родов Geotrichum, Candida, Alternaria, Paecilomyces, Aspergillus, Phoma, Humicola.

Изучение чувствительности возбудителей к антифунгальным препаратам показало, что нистатин ингибировал рост 78% выделенных культур грибов, кетоконазол - 67%, итраконазол - 59%, клотримазол - 33%, флуконазол - 19%, амфотерицин В - 11%. Активность препаратов в отношении различных видов грибов существенно варьировала, некоторые виды проявляли резистентность ко всем изученным препаратам. Это свидетельствует о необходимости индивидуального определения чувствительности гриба-возбудителя к антимикотикам в каждом конкретном случае. Следует отметить, что на практике терапия микозов пресмыкающихся затрудняется ограниченностью научных данных по данному вопросу, слабой изученностью действия антимикотиков (включая побочные эффекты) на организм животных различных видов.

Полученные данные демонстрируют, что среди рептилий, содержащихся в домашних условиях, микотические заболевания представляют существенную проблему, требующую пристального внимания ветеринарных врачей и специалистов-герпетологов. Для достоверной диагностики микозов рептилий необходимо проведение лабораторного микологического исследования, включая выделение культуры гриба и определение его чувствительности к набору антимикотиков. Следует учитывать, что экзотические животные, ввозимые из-за рубежа, могут являться вектором распространения эндемичных видов грибов, патогенных как для животных, так и для человека.

 

Литература

     1. Овчинников Р.С., Маноян М.Г., Гайнуллина А.Г. Этиологическая роль грибов-недерматофитов при поверхностных микозах животных. - Сборник научных трудов ВГНКИ. М.: 2007; т. 68. стр. 148-153.

2. Abarca, M., Martorell J., Castella G., Ramis A., Cabanes F. Cutaneous hyalohyphomycosis caused by a Chrysosporium species related to Nannizziopsis vriesii in two green iguanas (Iguana iguana). Med. Mycol. 2008; 46: 349-354.
3. Bertelsen M., Crawshaw G., Sigler L., Smith D. Fatal cutaneous mycosis in tentacled snakes (Erpeton tentaculatum) caused by the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii. J Zoo Wildl Med. 2005; 36(1): 82-7.

4. Bowman M., Paré J., Sigler L. Deep fungal dermatitis in three inland bearded dragons (Pogona vitticeps) caused by the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii. Med Mycol. 2007; 45(4): 371-6

5. Cabanes F., Alonso J., Castella G. Cutaneous hyalohyphomycosis caused by Fusariun solani in a loggerhead sea turtle (Caretta caretta). J.Clin.Microbiol. 1997; 35(12): 3343-3345.

6. Casadevall A. Fungal virulence, vertebrate endothermy, and dinosaur extinction: is there a connection? Fungal Genet.Biol. 2005; 42: 98–106.

7. de Hoog G., Guarro J., Gene J., Figueras M. Atlas of clinical fungi // Centraalbureau voor Schimmelcultures, Utrecht / Universitat Rovira I Virgilii, Reus. 2000. 1126 Р.

8. Frelier P., Sigler R., Nelson P. Mycotic pneumonia caused by Fusarium moniliformis in an alligator. Sabouraudia. 1985; 23(6): 399-402. 

9. Kane J., Summerbell R., Sigler L., Krajden S. Land G., eds. Laboratory Handbook of Dermatophytes: A Clinical Guide and Laboratory Manual of Dermatophytes and Other Filamentous Fungi from Skin, Hair, and Nails. 1997. 

10. Migaki G., Jacobson E.R., Casey H. Fungal diseases in reptiles, in Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. Diseases of amphibians and reptiles. Plenum Press, London, New York, 1984. pp. 183-204.

15. Nichols D., Weyant R., Lamirande E. Fatal mycotic dermatitis in captive brown tree snakes (Boiga irregularis). J Zoo Wildl Med. 1999; 30(1): 111-8
16. Pare J., K. Coyle A, Sigler L. Pathogenicity of the Chrysosporium Anamorph of Nannizziopsis vriesii for veiled chameleons (Chamaeleo calyptratus). Medical Mycology. 2006; 44: 25-31
17. Pare J., Sigler L., Hunter D. Cutaneous mycoses in chameleons caused by the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii (Apinis) Currah. J Zoo Wildl Med. 1997; 28(4): 443-53
18. 14. Rose F., Koke J., Koehn R., Smith .Identification of the etiological agent for necrotizing scute disease in the Texas tortoise. J Wildl Dis. 2001; 37(2): 223-8.
19. Thomas A., Sigler L., Peucker S. Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii associated with fatal cutaneous mycoses in the salt-water crocodile (Crocodylus porosus). Med Mycol. 2002; 40(2): 143-51

Полная версия статьи: http://vetpharma.org/articles/70/2193/